Cesko.wiki Kolagenáza
Author
Albert FloresKolagenáza je enzym, který se podílí na rozkladu kolagenu v těle. Kolagen je hlavní strukturální protein v lidském těle, který se nachází v mnoha tkáních, jako jsou kůže, kosti, šlachy a vaziva. Kolagenáza patří mezi matrix metaloproteinázy, což je skupina enzymů, které mají schopnost rozkládat různé složky mezi buněčného prostředí kolem buněk. Tento enzym hraje důležitou roli při procesech hojení ran, zánětu a degenerace tkání. Vzhledem k její schopnosti rozkládat kolagenu může být také použita v průmyslové výrobě k rozkladu kolagenu v potravinářském průmyslu nebo v kosmetice. Kolagenáza je důležitý enzym, který poskytuje důležité informace o stavu a funkci kolagenu v těle a má potenciál být využívána v lékařství a průmyslu.
Část řetězce kolagenu Kolagenáza je proteáza schopná rozkládat bíkovinu kolagen (základní složku mezibuněčné hmoty např. ve vazivu).
Kolagenázy se běžně používají ve výzkumu, a to zejména v případě, kdy je potřeba rozrušit mezibuněčnou hmotu a uvolnit z ní buňky. V tomto ohledu se osvědčila clostridiopeptidáza A izolovaná z bakterie Clostridium histolyticum (název této bakterie, histolyticum, odráží právě její schopnost rozkládat tkáně). +more K známým skupinám kolagenáz patří tzv. matrix metaloproteinázy a kathepsiny.
Enzym kolagenáza se používá nejen pro vědecké účely, ale našel své místo při léčení lidí i zvířat, zvláště pokud jde o léčení onemocnění kůže. Ve spojení s některými nespecifikými proteinázami urychluje hojení rány odstraňováním odumřelé tkáně a v důsledku toho zlepšuje epitelizaci. +more Kolagenáza se používá v případech transplantace tkáně a pro dezintegraci tkáně. Používá se při léčbě spálenin (poleptání) různých stupňů, proleženin, kožních vředů, strupů, atd. Epitelizace a vyléčení kůže pomocí kolagenázy je kromě toho více účinné a rychlé, také zabraňuje tvoření koloidů (zbytnělých jizev nádorovitého vzhledu) a hypertrofickému růstu jako výsledek utvoření rozpadlého kolagenu za působení kolagenázy.
Pro syntetizování kolagenázy jsou známy rozmanité druhy mikroorganizmů, kultivovaných za definovaných podmínek. Bylo zjištěno, že mezi všemi organizmy, které dokáží syntetizovat kolagenázu, je nejlepším jejím producentem bakterie Clostridium histolyticum. +more Maclennan J. D. , Mandl I. A Howes E. I. : J. Clin. Inv. 32, 1317 (1953) popsali podmínky pro růst Clostridium histolyticum. Zkoumali složení kapalného prostředí, které sestává hlavně z proteozovéhopeptonu, anorganických solí a roztoku vitamínů. Bakterie se kultivují při teplotě od 37 °C a při hodnotě pH 7,2. Berman S. , Lewenthal J. P. , Webster M. E. , Altieri P. L. a Gochenour R. B. : J. Bact. 82, 582 (1961) rovněž zkoumali podmínky pro růst Clostridium histolyticum s cílem produkovat kolagenázu. Měli úspěch při kultivování Clostridium histolyticum v živném prostředí, neobsahujícím žádné anorganické soli, ale pouze proteozový pepton, enzymaticky hydrolyzované proteinu kaseinu a soji (sójovou živnou půdu) a roztok vitaminu. Takové složení živného prostředí také podmiňuje další hodnoty podmínek, vyžadované pro uspokojivý růst a biosysntézu kolagenázy, jako je hodnota pH 8,5 a teplota od 30 °C.
Clostridium histolyticum je anaerobní bakterie a pro její kultivaci v kapalném prostředí musí být zabezpečeny anaerobní podmínky. Takahashi S. +more, a Seifert S. : J. Appl. Bact. 35, 47 (1972) použili při svých výzkumech redukční činidla thioglykolát sodný a bisulfit sodný pro získání anaerobních podmínek, nezbytných pro bakteriální růst. Optimální výsledky, tj. nejvyšší výtěžek kolagenázy, byl získán při použití uvedených redukčních činidel v poměru 1:1.
Pro extrakci kolagenázy z různých zdrojů (jak bakteriálních, tak jiných) bylo doposud popsáno větší množství postupů využívajících nejrůznější pufrační systémy a většinou zahrnující precipitaci k izolaci funkčního proteinu. Tyto postupy jsou však prováděny ve fyziologickém pH 7,4‐7,6, které není optimální pro produkcí bakteriální kolagenázy a za nízké teploty, která je nejvhodnější. +more Např. Yoshida, E. and H. Noda, 1965. Isolation and characterization of collagenase I and II from Clostridium histolyticum. Biochem. Biophys. Acta, 10593: 562‐574. DOI: 10. 1016/S0926‐6593(65)80239‐9; nebo Sakamoto, S. , P. Goldhaber and M. J. Glimcher,Tissiue Res. , 10: 142‐151. DOI: 10. 1007/BF02012544; nebo Bond, M. D. and H. E. Van Wart,1984. Characterization of the individual collagenases from Clostridium histolyticum. Biochemistry, 19: 3085‐3091. DOI: 10. 1021/bi00308 a036; nebo Matsushita, O. , K. Yoshihara, Clostridium perfringes 120‐Kilodalton collagenase and nucleotide sequence of the corresponding gene. J. Bacteriol. , 176: 149‐156. PMCID: PMC205026.
Kolagenázy se vyrábějí z bakteriálního kmene Cl. histolyticum, která je produkuje přirozeně do svého okolí zároveň s mnoha dalšími enzymy se schopností natrávit živočišné tkáně. +more Výsledkem průmyslového čištění je vysoké obohacení výsledného produktu kolagenázou. Zbytková příměs dalších proteolytických enzymů, která je souhrnně charakterizována jako trypsinu podobná aktivita (Trypsin-Like Activity, TLA) je odlišná u jednotlivých produktů, může být funkčně významná a může kolísat mezi šaržemi. Kolagenázová aktivita je uváděna ve Wunschových jednotkách, které stanoví specifickou kolagenázovou proteolytickou aktivitu pomocí oligopeptidového substrátu se sekvencí podobnou kolagenu, avšak s velmi krátkým řetězcem. Měří schopnost kolagenázy štěpit kolagenu podobnou sekvenci, avšak bez ohledu na její schopnost navázat se na plnohodnotný kolagen a pak jej štěpit. Schopnost vazby na kolagen je při izolaci ostrůvků nutná. Proto byla pro stanovení aktivity kolagenázy vyvinuta další metoda, která využívá celé molekuly kolagenu jako substrátu. Takto stanovená aktivita (Total collagen degrading activity) zahrnuje jak specifickou proteolytickou aktivitu, tak vazbu na kolagen. V průběhu výroby dochází k částečné degradaci kolagenázy. Jedná se především o rozdělení podjednotky s enzymatickou aktivitou od podjednotky vážící kolagen. Tuto degradaci Wunschovy jednotky nemohou postihnout a v případě degradace udávají falešně vyšší aktivitu. Proto byla vyvinuta metoda pro testování integrity obou kolagenáz C1 a C2, která je založená na principu HPLC a přítomnost štěpených produktů kvantifikuje.
